高中生物实验方法归纳(高中生物实验思路的答题模板)

导语：高中生物实验分析的方法！高考实验题必备资料！

　在高中生物实验教学过程中，发现不少学生只重视实验结果，不重视分析结果；；只满足于实验的成功，而不愿对实验失败的原因进行分析。造成这种现象的原因，除了是学生对实验的根本目的缺乏深刻的认识而外，不懂得如何分析实验、没有掌握实验分析的一般方法是非常重要的因素。生物学是一门实验性很强的学科，在实验过程是，会有多种因素影响、干扰实验结果，致使实验失败。

1第一步：取材分析

正确取材是实验成功的第一步。有的学生实验失败的原因，往往是取材不正确而引起的，因而在实验分析时，要首先考虑取材是否正确。例如，实验一“观察植物细胞的有丝分裂”（以下简称“实验一”）中，准确切取洋葱根尖生长点部位，是实验成功的前提。一些学生制成的装片中往往看不到或看到很少的分裂相细胞，就是因为切取部位正确导致的，即没有选准根尖的生长点部位。实验二“观察植物细胞的质壁分离和复原”（以下简称“实验二”）中，取材部位应该是在新鲜的洋葱鳞片叶外表皮的紫色较深处。而在内表皮或紫色很浅的部位取材，往往观察不到或仅有很少紫色液泡。实验三“观察根对矿质元素离子的交换吸附现象”（以下简称“实验三”）中，剪取的是有活性的根，如果是死根、烂根，则观察不到预期的结果。实验四“叶绿体色素的提取的提取和分离”（以下简称“实验四”）中，选取的时片要肥厚、色浓，而老叶、发黄的叶子则不能选龋

2第二步：药品与试剂分析

药品与试剂的量、浓度、纯度等都是影响实验正确结果的重要因素，要逐一检查，不能忽视。

1．2．1关于量的问题。有些实验对药品与试剂的量有一定的要求，如实验四中，丙酮、层析液的量就要按规定使用：提取5ｇ叶片中的色素，用2ｍｌ丙酮是适中的，若丙酮过多，会使色素浓度降低，减少滤纸条上色素的量，使分离效果不明显；若丙酮少了，色素提取又不充分。色素分离时，向烧杯中例入层析液时，其量的标准是液面不能超过1ｃｍ（距烧杯底），否则将没及滤纸条上的滤液细线，色素就迅速溶解到层析液中去了，结果在滤纸条上得不到相应的色素分离图谱。

1．2．2关天浓度问题。实验中，规定的浓度，都是人们经过多次试验后，认为最适合的。实验员在实验前配制药品与试剂时，浓度要配准，否则将会影响学生实验。如蔗糖溶液浓度较高时（高于30％），会使细胞因发生强烈质壁分离而失水过多，细胞死亡，不能复原。亚甲基蓝溶液在配制时，要求更高，浓度高一点点，就会影响根的活性。

3第三步：步骤及操作分析

步骤及操作是否正确是影响实验结果的主要因素，故应重点分析，主要有以下三种情况。

1．3．1漏做某个实验步骤。实验步骤不能少，如实验一中，根尖用10％盐酸解离后，若不经漂洗直接染色，则染色效果极差，因为根尖上附着的盐酸将和碱性染料起中和反应，从而影响着色；制片时，用镊子尖把根尖开碎，这一步也易漏掉。实验三中根经亚甲基蓝染色后，若不用蒸馏水反复冲洗，在后面的对比实验中，蒸馏水也将变蓝。

1．3．2操作方法错误。在具体操作某个步骤时，没有按规定的操作方法做，肯定会影响实验结果。如临时装片制作时，有的学生将盖玻片直接放在清水滴上，这样制成的装片中，气泡较多，严重影响观察。实验二中，应用镊子撕取洋葱表皮，而不少学生是用刀片削或挖，以至取出的表皮较厚，这样在显微镜下也就看不到单层细胞。

4第四步：显微镜的使用分析

需用显微镜的实验，有时会因为显微镜的操作，镜头污染等问题，而影响观察，看不到已经出现的现象或结果。显微镜的操作要按一定的程序进行，如对光程序、高倍镜观察程序等。有的学生不按程序操作，结果既耽误了时间，又观察不到相应的结果，而且易损坏显微镜。例如常有学生在用高倍镜观察时，把盖玻片压碎了，弄脏了镜头，就是由于这些学生在下降镜筒时，眼睛看的是目镜而不是物镜，这样，镜筒下降到什么位置就不知道了。正确的程序应该眼睛看着物镜，同时下降镜筒，让物镜接近装片，然后眼看目镜、调节细准焦螺旋直至观察到清晰物像。此外，目镜或物镜头被严重污染、焦距没有调好、放大倍数不够、视野较暗、标本不在通光孔的中心位置等诸多因素，都会直接影响观察。

化学物质的检测方法

淀粉：碘液(蓝色)。

2、还原性糖：斐林试剂班氏试剂(沸水浴后生成砖红色沉淀)。

3、CO2：Ca(OH)2溶液(澄清石灰水变浑浊)。

乳酸：pH试纸。

O2：余烬复然；无O2：火焰熄灭。

6、蛋白质：被蛋白酶水解、双缩脲试剂(紫红色)。

7、脂肪：苏丹Ⅲ染液(橘黄色）、苏丹Ⅳ染液(红色）。

8、DNA：二苯胺(沸水浴，蓝色)或甲基绿（染色后，呈绿色），也可用DNA酶。

9、RNA：吡罗红（呈红色）、苔黑酚乙醇溶液

实验条件的控制方法

1、隔绝气体：密封玻璃容器可用石蜡，隔绝空气与液体可用油膜；排气或充气可依据升温或冷却。

2、增加水中氧气：泵入空气或吹气或放入绿色植物；减少水中氧气：容器密封或油膜覆盖或用凉开水。

3、除去容器中CO2：NaOH溶液；增加容器中的CO2：NaHCO3溶液。

除去叶中叶绿素：酒精水浴加热。

6、析出或溶解物质：水溶性根据溶解度，脂溶性可用丙酮或酒精。

7、除去植物光合作用对呼吸作用的干扰：给植株遮光；

实验中控制温度的方法：

①、还原糖，DNA鉴定：沸水浴加热。

②、酶促反应：水浴保温。

③、用酒精溶解叶中的叶绿素：酒精要隔水加热。

④、细胞和组织培养以及微生物培养：恒温箱培养。

⑤、降温，冷却；升温，加热。

10、维持PH：缓冲溶液（HCO3-/H2CO3，HPO43-/H2PO42-）；降低加酸或生理酸性盐，升高加碱或生理碱性盐。

11、血液抗疑：加入柠檬酸钠（去掉血液中的Ca2+）。

线粒体提取：细胞匀浆离心。

13、动物细胞的处理：破裂用清水，细胞的失水用NaCl。注意搅拌。

骨无机盐的除去：盐酸溶液。

15、灭菌方法：培养基用高压蒸汽灭菌；接种环用火焰灼烧灭菌；双手用肥皂冼净，擦干后用75%酒精消毒；实验室或接种箱用甲醛蒸汽或紫外灯灭菌；整个过程都在实验室无菌区或酒精灯旁进行。

16、消除叶片中脱落酸的影响：去除成熟的叶片；

17、消除植株本身的生长素：去掉生长旺盛的器官或组织（芽、生长点）；

18、补充植物激素的方法：涂抹、喷洒、用含植物激素的羊毛脂膏或琼脂作载体；

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